Санитарно – гигиенический режим в хирургическом стационаре. Методы антисептики. Уход за больными в предоперационном периоде.

Санитарно – гигиенический режим в хирургическом стационаре. Методы антисептики. Уход за больными в предоперационном периоде.

 Положение о хирургическом отделении и его планирование .

Современное хирургическое отделение – это сложный лечебный комплекс , деятельность которого регламентируется соответствующими санитарно – гигиеническими нормами. Хирургические отделения рекомендуют размещать в отдельных помещениях окнами на юг, юго-восток или юго-запад. Такое деление создает условия для освещения палат естественным солнечным светом , с достаточной дозой ультрафиолетовых лучей , пагубно воздействуя на различные возбудители инфекционных заболеваний. Основное требование к хирургическому отделению – его изоляция от других отделений больницы. Общехирургическое отделение районных и городских больниц состоит из приемного отделения, палат для больных (стационар) ,дополнительных помещений (столовая, манипуляционная , сестринская и др.) и операционно- перевязочного блока.

Приемное отделение.

 

Приемное отделение функционирует по типу санпропускника , где проводится ​​первичная сортировка больных. Приемное отделение состоит из регистратуры , кабинета первичного осмотра больных , душевой , ванной комнаты , шаф для белья , туалет. В отдельных больницах при приемных отделениях создают 1-2 диагностические палаты , а также изолятор для инфекционных больных. Осмотр больных проводят на кушетке , покрытой клеенкой , которую после осмотра каждого больного протирают салфетками , смоченными дезинфицирующими растворами. После осмотра больных , исследования ран и замены повязок персонал моет руки теплой проточной водой с мылом в течение 3 мин и обрабатывает руки растворами бактерицидных препаратов ( 0,2 % раствор хлорамина , 0,1 % дезоксон -1 , 76⁰ этиловый спирт , 0,5 % раствор хлоргексидина в 70⁰ этиловом спирте , Стерилиум и др.). В приемном отделении больному проводят санитарную обработку ( гигиенический душ , ванна) , переодевают в больничную одежду (халат , белье , тапочки). При госпитализации ургентного больного проводят забор крови , мочи и других биологических жидкостей для анализа.

Хирургическое отделение .

 

Лечат больных в специально оборудованных и оснащенных хирургических отделениях.

В крупных стационарах создают специализированные отделения на 30 – 40 коек для оказания помощи больным с сосудистой , эндокринной , легочной и др. патологией. Чтобы предупредить передачу гнойной инфекции от одного к другому больному, желательно иметь чистое хирургическое отделение и отделение хи рургической инфекции. Они должны быть изолированы друг от друга , иметь отдельный инвентарь, оборудование и обслуживающий персонал. Если невозможно сделать отдельные отделения для гнойных больных отводят отдельные палаты и перевязочные. В этих условиях важное значение имеет соблюдение чистоты и порядка в отделении. Всю работу планируют так , что сначала проводят операции , затем выполняют перевязки чистых больных и только после всего – гнойные перевязки (порядок перевязок ). В состав хирургического отделения входят палаты для больных, операционный блок , перевязочные , манипуляционная и вспомогательные помещения (туалет , ванная , столовая , буфет , комнаты для белья , обслуживающего персонала, стерилизационная и др.) . Палаты должны быть просторными , из расчета 6,5 -7,5 кв.м. площади на каждого больного. В палате целесообразно размещать 2-4 кровати. Естественное освещение должно быть таким , чтобы отношение площади окон к площади пола составляло 1:6.

 

 

Искусственное освещение должно обеспечиваться люстрами с матовыми пла – фонами и настольными лампами для тяжелобольных. Больной должен иметь удобную кровать , лучше функциональную или со специальным подголовником , тумбочку , стул для посетителей.

 

 

В палате должно быть убрано , чисто , тихо. Температурный режим должен соблюдаться в пределах 18-20 ° С. Радио больные должны слушать в наушниках , смотреть телевизор в отдельных комнатах. Для наиболее тяжелых послеоперационных больных в хирургическом стационаре оборудуют палату или отделение интенсивной терапии со специальной аппаратурой , набором медикаментов , инструментов , необходимых для возможного проведения реанимационных мероприятий. Больных , умирающих, располагают в специальных палатах – изоляторах. Хирургическое отделение должно быть оборудовано центральным водопроводом ( холодная , теплая вода ) , центральным отоплением , канализацией и приточно – вытяжной вентиляцией. Гигиенические нормы объема воздуха в палате составляют 27-30 м3 , что при естественном или искусственном воздухообмене позволяет в помещении создать концентрацию углекислоты не более 0,1 % , скорость движения воздуха должна быть 0,10 – 0,15 м / с при влажности воздуха 50-55 %. Это оптимальные условия для нормальной жизнедеятельности человека . Указанные параметры можно легко регулировать с помощью кондиционера. Для связи дежурного персонала с больными в палатах должна быть звуковая или световая сигнализация. Коридоры должны быть просторными , уютными . На пол настилают линолеум . В хирургическом отделении проводят влажную уборку с добавлением антисептиков ( хлорной извести , хлорамина , Микробак , Сокрена и др.). Уборку нужно проводить два раза в сутки. Влажнуюуборку в палатах начинают с удаления пыли с подоконников , тумбочек , плафонов , кроватей . При этом следует открыть форточки. Лежачие больные должны быть хорошо покрытыми . Уборку следует проводить от окон и стен к двери. Влажную уборку мебели проводят каждый день . Панели моют один раз в три дня . Верхние части стен , потолок , плафоны очищают от пыли не менее двух раз в месяц. Одновременно протирают оконные рамы и двери . Важное значение имеет соблюдение санитарно – гигиенических требований в столовой. Посуду моют в двух водах при температуре 70-90° С или в водяной ванне с добавлением горчицы или специальных средств для мытья посуды. Нельзя использовать посуду с обитыми краями. Пищевые отходы собирают в специальные закрытые ведра. Для содержания санитарного узла в надлежащем порядке необходимо иметь специальные обозначены ведра , тряпки , швабры. Их нельзя использовать для уборки других помещений. Четкое соблюдение санитарно – гигиенических норм является залогом профилактики внутригоспитальной инфекции.

Сестринский пост.

 

Его размещают, как правило, в коридоре недалеко от палат. На столе дежурной сестры должна быть световая или звуковая сигнализация , телефон , настольная лампа и др.

 

Манипуляционный кабинет

 

 

в манипуляционном кабинете находятся: 1) шафы для медика ментов и стерильных шприцев с надписями “внутреннее” , ” для инъекций “, ” внешнее”, которые закрываются на ключ; 2) столик для боксов с стериным материалом и антисептических средств (спирт, хлоргекседин, Йодынол и др.) 3) сейф для хранения сильнодействующих и наркотических препаратов; 4) холодильник для внутривенных растворов; 5) умывальника с полотенцем; 6) кушетка, стулья. Рабочее место сестры хирургического отделения должно содержаться в образцовом порядке. Медицинская сестра должна строго соблюдать правила личной гигиены: быть опрятной , одетой в чистый халат, шапочку или косынку . При выполнении инъекций или инфузий необходимо обязательно пользоваться маской и резиновыми перчатками.

 

Положение о режиме по уходу за хирургическими больными

Вся работа в хирургическом отделении основывается на принципах охраны лечебного режима. Больной должен быть окружен вниманием и заботой медицинского персонала. Госпитализированного больного в отделение сопровождает медицинская сестра или санитарка приемного отделения. Очередная медицинская сестра по указанию заведующего отделением или дежурного хирурга размещает больного в одну из палат. Всех тяжелобольных и тех, кто нуждается в неотложной хирургической помощи (острые заболевания органов брюшной полости, травмы живота , грудной клетки и др.).  Доставляют в хирургическое отделение на каталке. Больных, которым необходима срочная операция , направляют в отделение интенсивной терапии для проведения предоперационной подготовки или непосредственно в операционную. Весь медицинский персонал должен строить свой рабочий день согласно режима работы хирургического отделения (табл. 1).

Примерное соблюдения режима, порядка и дисциплины в отделении увеличивает настроение больного и вызывает уверенность в скором выздоровлении. Все больные должны соблюдать больничный режим, выполнять рекомендации врача. Они знакомятся с режимом хирургического отделения в приемном отделении, о чем расписываются в карте стационарного больного . За нарушение режима больных выписывают из стационара.

Таблица 1
Режим дня хирургического отделения

7.00  –        Подъем больных
7.00 – 7.30 Измерение температуры , гигиеническая гимнастика
7.30 – 8.00 Утренний туалет , забор крови , мочи и других биологических веществ для
анализа . уборка отдела
8.00 – 8.30 Раздача лекарств , выполнение манипуляций и процедур
8.30 – 9.00 Завтрак
9.00 -10.00 Обход врачей
10.00 – 14.00 Выполнение врачебных назначений , перевязки больных , выполнения
операций , консультирование больных
14.00-14.30 Обед
14.30 – 16.30 Время дневного отдыха
16.30 -17.00 Измерение температуры
17.00 – 19.00 Посещение родственников
19.00 – 19.30 Ужин
19.30 – 21.30 Раздача лекарств , выполнение вечерних манипуляций и процедур ,
подготовка больных к операции
21.30 – 22.00 Вечерний туалет
22.00 -7.00 Сон

 

В хирургическом отделении руководство работой медсестер и санитарок осуществляет старшая медицинская сестра, которая непосредственно подчиняется заведующему отделения, выполняет его указания по уходу и обслуживанию больных и несет полную ответственность за работу младших медицинских работников. На эту должность назначают людей, которые имеют стаж работы в качестве медицинской сестры не менее 3 – х лет и, как правило, тех, которые имеют аттестацию первой категории. При этом старшую медицинскую сестру хирургического отделения назначает и освобождает главный врач больницы за рекомендацией заведующего хирургическим отделением. Как уже было сказано, в ее непосредственном подчинении находится младший медицинский персонал отделения. Работа старшей сестры очень ответственная. Обязанности старшей медицинской сестры хирургического отделения:

1. Проводит целесообразный подбор медицинских сестер с учетом их психологической совместимости.

2.Составляет графики работы медперсонала, расписания.

3. Обеспечивает нормальную работу отделения путем своевременной замены медсестер и санитарок , которые не смогли выйти на работу в связи с болезнью или другими причинами.

4. Следит за своевременностью и четкостью выполнения назначений врача.

5 . Систематически обеспечивает отделение медпрепаратами и мединструментарием , а также другими предметами ухода за больными.

6. Следит за использованием , хранением , распределением , механизмом списывания и контроля медпрепаратов , медицинского инструментария и предметов ухода за больными.

7. Обеспечивает санитарно – эпидемиологический режим в отделении.

8 . Следит за правилами хранения и учетом наркотических медикаментов.

9 . По распоряжению заведующего отделением проводит организацию индивидуальных постов у тяжелобольных.

10 . Обеспечивает выполнение правил внутреннего распорядка отделения , соблюдение принципов лечебно -охранительного режима .

11 . Проводит контроль соответствия питания для больных , составляет порционные заказ на питание , согласно диетических столов , следит за качеством приготовленной пищи и ее раздачей .

12 . Учет принятия и выписки больных , составляет отчет о движении больных в отделении , передает в приемное и поликлиническое отделение данные о наличии свободных мест .

13 . При выписке тяжелобольного сообщает родственников о месте и времени выписки или перевода его в другое отделение . В случае необходимости для больного назначает сопровождающего из сотрудников отделения и организует транспортировку технического персонала штата 14 . Под руководством заведующего отделением разрабатывает и контролирует выполнение планов повышения квалификации медицинских сестер.  15 . Участвует в работе совета медицинских сестер больницы , сестринских конференциях .

Требования к палатной медицинской сестры хирургического отделения:

Медицинская сестра отделения в части обслуживания больных подчиняется непосредственно ординатору отделения , в части распорядка работы – старшей сестре отделения. Она отвечает за своевременное и правильное выполнение врачебных назначений , качество ухода за больными в порученных ей палатах или кабинете ( перевязочной , манипуляционной ). На должность палатной медицинской сестры назначают медицинских сестер с первым уровнем аккредитации.

 

Обязанности палатной медицинской сестры хирургического отделения:

1 ) госпитализация больных , проверка правильности проведения их санитарной обработки , ознакомление больного с правилами внутреннего распорядка ;

2 ) сбор материала для исследования (кровь , моча , кал) и отправки его в лабораторию ;

3 ) подготовка больных к выполнению диагностических исследований ( эндоскопия , рентгенография , ЭКГ и др.). И сопровождение или транспортировка их в различные диагностические кабинеты ;

4 ) добросовестное выполнение всех назначений врача , которые заносятся в листы назначений ;

5 ) обязательное присутствие на обходах врача , отчетности ему обо всех изменениях, которые произошли в состоянии больного за время дежурства;

6 )измерение температуры тела (утром и вечером) и запись данных в температурный лист ;

7 ) измерение артериального давления , частоты пульса , дыхания , суточного диуреза и сообщения этих данных врачу ;

8 ) наблюдение за состоянием операционной раны ( повязки ) и выделениями из дренажей ;

9 ) внимательный и пристальный контроль за состоянием больного , при необходимости немедленное предоставление ему неотложной помощи (искусственное дыхание, непрямой массаж сердца , остановка кровотечения) ;

10 ) контроль за соблюдением больными назначенной диеты , составление порционного требования , кормление тяжелобольных , проверка качества продуктов , что приносят родственники ;

11 ) контроль за работой технического процесса ( санитарок , уборщиц) и соблюдением мер по санитарно – гигиеническому режиму в отделении (замена белья , профилактика пролежней , уход за кожей , ротовой полостью больных и др.)

12 ) тщательное ведение медицинской документации , куда входят журнал приема и передачи дежурств , журнал медикаментозных и порционных требований , листы лекарственных назначений , температурные листы др. Для добросовестного выполнения обязанностей хирургической медицинской сестры за короткий промежуток времени ей необходимо изучить большой раздел общей хирургии , ознакомиться с основными хирургическими заболеваниями , их диагностикой и лечением , особенностями ухода за больными. Оказание медицинской помощи является святой обязанностью каждого медицинского работника независимо от уровня его образования и специальности . Невнимательное отношение или неоправданное уклонение от выполнения своих обязанностей ведет к юридической ответственности .

 

Положение о перевязочной . Перевязочная .

 

Требования к перевязочной должны быть такие же , как и в операционной ( светлая комната , потолок которой должна быть окрашена масляной краской , стены и пол устланы плиткой ) . В перевязочной необходимо поддерживать идеальную чистоту. Стол для инструментов и перевязочного материала накрывают так же , как и в операционной . Инструменты подают корнцангом . Перевязку проводят только с помощью инструмента . Инструменты стерилизуют в самой перевязочной или в стерилизационной комнате операционного блока . Перевязочная должна быть обеспечена центральной подачей холодной и теплой воды . Оптимальная температура должна быть 18-20 ° С. В перевязочной не должно быть посторонних предметов , одежды , кроме стола для перевязок , стола для инструментов и перевязочного материала , шкафы для медикаментов и инструментов и стульев для больных. При проведении перевязок необходимо учитывать степень чистоты ран больных. Больных с осложнениями , гнойными ранами перевязывают в последнюю очередь. В конце рабочего дня проводят влажную уборку перевязочной и облучение ультрафиолетовым лучом ( кварцевание ). В больших хирургических отделениях , как правило , есть две перевязочные – для ” чистых ” и ” гнойных ” больных.

Обязанности перевязочной медицинской сестры :

1 . Выполняет назначенные врачом – ординатором манипуляции , которые разрешены для выполнения медицинской сестрой.

2 . Сопровождает тяжелобольных после проведенных манипуляций в палату.

3. Строго придерживается правил асептики и антисептики.

4 . Готовит к стерилизации и стерилизирует перевязочный материал и инструментарий согласно действующей инструкции .

5. Осуществляет систематический бактериологический контроль за перевязочным материалом , инструментарием , помещением перевязочной .

6 . Обеспечивает систематическое пополнение , учет, хранение и контролирует расходмедикаментов , перевязочного материала , инструментария и белья.

7 . Инструктирует младший медицинский персонал перевязочной и контролирует его работу.

8. Ведет учетно – отчетную документацию.

9. Систематически повышает свою профессиональную квалификацию.

10. Участвует в санитарно – просветительной работе .

 

Инфекционный контроль работы хирургического стационара.

С целью профилактики гнойных заболеваний и соблюдение санитарно – гигиенических норм бактериологическая лаборатория санитарно -гигиенической станции , которой подчиняется лечебному учреждению , осуществляет один раз в 15-20 дней бактериологический контроль загрязненности воздуха ( операционной , перевязочной , палат ) , контроль качества дезинфекции , обработки рук персонала , стерильности хирургического материала и инструментов. Контроль микробного загрязнения воздуха в операционной и перевязочной проводят один раз в месяц. Загрязненность воздуха в палате и перевязочной можно определить с помощью седиментационного , фильтрационного и метода ударной волны воздуха . Принцип седиментационного метода заключается в том , что микроорганизмы , которые находятся в воздухе , оседают на горизонтальную поверхность. Для этого исследования используют чашки Петри с питательной средой (2% агар ), в течение 15 мин оставляют открытыми в заранее определенных местах операционной или перевязочной. После этого чашки Петри помещают в термостат на 24 ч и подсчитывают количество выросших колоний . Фильтрационный метод исследования основан в просасывании 10-40 л воздуха через специальные поглотители со стерильной жидкостью. Принцип ударной волны состоит в том , что всосавшыйся через аппарат воздух ударяется в поверхности , которая содержит питательные среды, вследствие чего микроорганизмы задерживаются на ней . Пробы воздуха осуществляются с помощью аппарата Кротова .

В операционной количество колоний микроорганизмов на 1м3 воздуха не должно превышать 500 к работе и 1000 – во время и после работы операционной . Для перевязочной и предоперационной допускается не более 1000 колоний на 1м3 в воздухе к работе. Кроме того , в пробе объемом 250 л воздуха не должно быть гемолитического стафилококка.

 

Контроль качества дезинфекции осуществляется внезапно , без ведома , 1-2 раза в месяц. Стерильным ватным тампоном , смоченным стерильным изотоническим раствором хлорида натрия или 1 % раствором гипосульфита , проводят смыв С 10 предметов , площадь смыва должна быть 200-300 см3. Удовлетворительную оценку дезинфекции дают при отсутствии роста кишечной палочки , протея , синегнойной палочки , стафилококка и стрептококка.
Посевы из рук , как правило , проводит старшая операционная сестра так , чтобы персонал не знал , когда и у кого он будет взят . Результаты посева должны обсуждаться и сопоставляться с частотой послеоперационных осложнений. Такой контроль способствует улучшению качества мытья рук персоналом и уменьшению количества послеоперационных осложнений.

Кроме обязательного повседневного контроля эффективности стерилизации в автоклаве ( перевязочного материала , белья ) с помощью стандартных ампул или серы , необходимо каждые 10 дней проводить посевы с простерилизованного материала. Особое внимание следует уделять качеству стерилизации шовного материала. Посевы из шелка , волокна необходимо проводить до начала стерилизации , во время ее и при хранении не реже одного раза в 10 дней .

Для контроля стерильности рук медицинского персонала , перевязочного и шовного материала старшая операционная сестра должна иметь специальный журнал . Для выявления и санации носителей патогенной микрофлоры 1-2 раза в год всем работникам хирургического отделения делают мазки из носа и горла специальными тампонами. Выявленных носителей патогенной инфекции санируют в обязательном порядке. При отсутствии положительных результатов леченияния хронических воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей и полости рта работников переводят на другую работу .

              М.И.Пирогов одним из первых высказал мысль, что заражение ран вызывается руками хирурга и его помощников , а также через нательное и постельное белье. Для предупреждения возможного заражения ран он применял для дезинфекции спирт , ляпис , йод.

 

           В 1847 г. основываясь на большом личном опыте венгерский врач акушер – гинеколог И. Земмельвейс утверждал , что причина послеродового сепсиса – это занесение заразы руками врача при внутреннем исследовании после родов . Введение ним в практику мытья рук 10 % раствором хлорной извести значительно сократило количество указанных осложнений.

         Английский хирург Д. Листер , основываясь на открытиях Л.Пастера и анализе причин гибели больных после операций , пришел к выводу , что причиной осложнений является бактерии. Разработал ряд методик уничтожения микробов как в воздухе , на руках , в ране , а также на предметах , касающихся раны. Как средство уничтожение микробов он выбрал карболовую кислоту. Листер разработал систему мероприятий , направленных на уничтожение микробов в ране , получивших наименование антисептического метода хирургической работы (1867 г.).

 

 

 

Антисептика , ее виды , характеристика

Антисептика ( лат. anti – против , sepsis – гниение ) . К середине XIX века более 80 % оперированных больных умирали от различных осложнений , причиной которых были нагноения ран. Одним из первых , кто высказал мнение , что заражение ран происходит через руки хирурга , его помощников , инструменты , белье , был венгерский врач Игнац Земмельвейс , который в 1847 впервые применил для обработки рук медицинского персонала хлорную известь с целью профилактики послеродового сепсиса. Великий русский хирург Н.И. Пирогов связывал нагноение в ранах с существованием своеобразных больничных миазм ( загрязнений) и для лечения ран применял спирт , йод , ляпис . И только в 1867 г. английский хирург Джозеф Листер , согласно учению Луи Пастера о разложении органических веществ за счет ” зародышей ” из воздуха , пришел к выводу , что причиной гнойных осложнений и смерти больных после операции являются микробы . В качестве средства для уничтожения микробов в ране Д. Листер предложил и широко использовал карболовую кислоту . С его именем связана разработка нового антисептического метода хирургической работы .

Джозеф Листер и его современники под ” антисептиком ” понимали уничтожение возбудителей гнойных процессов в ране и на всех объектах внешней и внутринней среды , контактирующие с раной , с помощью химических веществ . В дальнейшем с введением в медицинскую практику стерилизации, дезинфекции , химиотерапии , асептики представление о антисептике изменилось .

И сегодня под антисептикой следует понимать комплекс лечебно-профилактических мероприятий , направленных на ликвидацию микробов в ране и организме в целом.

Различают механическую, физическую , химическую и биологическую антисептику .

механическая антисептика

Механическая антисептика – это комплекс механических мер, направленных на уничтожение инфекции в ране или создания неблагоприятных условий для ее развития. Следует помнить , что все бытовые ранения являются инфицированными . Микроорганизмы, попавшие в рану , проходят период адаптации и при благоприятных условиях размножаются. Установлено , что в первые часы после ранения (6-12 ч ) микроорганизмы находятся в пределах поврежденных тканей и только со временем через лимфатические , кровеносные сосуды распространяются на здоровые ткани. Вот почему в этот период необходимо проводить обработку раны – промывание ее , удаление сгустков крови , омертвевших тканей , инородных тел. Такие раны заживают без осложнений. При нагноении ран удаляют омертвевшие ткани , гнойные заплывы . После очищения раны от гноя , некротических тканей и появления грануляций ( молодой соединительной ткани) накладывают вторичные швы.

физическая антисептика

Физическая антисептика – создание неблагоприятных условий для развития и размножения микроорганизмов в ране с помощью физических свойств различных средств. Чаще всего с этой целью применяют гигроскопичные перевязочные материалы : марля , салфетки , турунды , дренажи . Однако следует помнить , что содержание раны очень быстро пропитывает перевязочный материал и через 5-6 ч он теряет отсасывающих свойство . Для продолжения и улучшения всасывания перевязочный материал дополнительно пропитывают гипертоническими растворами или гиперосмолярными антисептическими мазями ( Нитацид , стрептонитол , офлаксин и др. ), благодаря чему можно заменять повязки через 12 час. Для лучшего очищения раны широко используют дренажные трубки или резиновые полоски, которые изготавливают из хирургических перчаток , через них содержимое может выделяться самостоятельно ( пассивное выделение ) , а при соединении дренажных трубок с отсосами ( водными , электрическими ) – активно. К методам физической антисептики можно отнести облучение ран ультрафиолетовыми лампами , ультразвуковыми , лазерными установками. При этом достигается не только высушивание ран , но и бактерицидное действие на микрофлору . В последнее время налажен выпуск специальных аэротерапевтических установок (АТУ ) с ламинарным потоком стерильного воздуха .

Использование такой установки обеспечивает создание специальной среды , что благоприятно влияет на течение раневого процесса и задержку роста микрофлоры. При отсутствии такой аппаратуры раны можно лечить открытым способом без повязок (действие воздуха , солнечных лучей).

Химическая и биологическая антисептика

Химическая и биологическая антисептика – это основной вид антисептики , при котором для уничтожения микробов в ране или в организме в целом применяют различные химические или биологические середства.

Их разделяют на антисептики и препараты .

Антисептика – это в основном антимикробные вещества неспецифического действия . Антисептические препараты можно использовать для местного лечения ран в виде растворов , порошков , мазей , эмульсии , для ванн ( при ожогах или других крупных ранах ) для введения в гнойные полости через дренажные трубки , для санации ( оздоровления ) всего организма – внутримышечно, внутривенно , внутриартериально , внутрикостно, эндолимфатически и энтерально ( через рот или в виде клизмы) .

Чаще всего используют такие группы антисептиков :

 

1 . Группа галоидов .

 

Хлорамин ( Chloraminum ) – белый с желтоватым оттенком кристаллический порошок. Содержит 25-29 % активного хлора , применяется как дезинфицирующий и дезодорирующий препарат. Его используют для лечения инфицированных ран (промывание , смачивание салфеток, турунд 1,5-2 % раствором ) дезинфекции рук ( 0,25-0,5 % раствор) ; дезинфекции неметаллического инструментария ; обработки предметов ухода за больными( мочеприемник , судов и др.), для обеззараживания выделений ( кала , мочи , мокроты (3-5 %).

 

Хлорацид ( Chloracidum ) – белый кристаллический порошок , растворяется в воде , спирте , в виде 0,5 % раствора применяется для обработки рук хирурга , стерилизации катетеров , дренажей , промывания гнойных полостей , лечения инфицированных ран .

Хлоргексидин ( Chlorhexidinum ) – выпускают в виде 20 % водного раствора – 500 мл . Есть достаточно эффективным средством от грамположительных и грамотрицательных микробов , стимулирует фагоцитарное действие относительно грибков. 0,5 % спиртом товый раствор широко применяют для обработки рук хирурга , операционного поля , стерилизации хирургического инструментария . Водный раствор хлоргексидина используют при гнойно – септических процессах (промывание ран , полостей , мочевого пузыря и др.).

Спиртовой раствор йода ( SolutioYodi spirituosa ) . Препараты йода- старые антисептические средства . Однако в связи с раздражающим действием йода на кожу и слизистые оболочки , а также наличием токсико – аллергических свойств использования его на сегодня запрещено приказом министра ОС Украины .

Широкое применение на сегодняшний день имеют препараты йода- йодофоры , они имеют высокие антисептические свойства , не создают резистентных форм микроорганизмов и не имеют побочного действия на организм.

Йодинол ( Iodinoli ) – водный раствор 0,1 % йода , 0,3 % калия йодит и 0,9 % поливинилового спирта. Йодинол используют при лечении термических и химических ожогов , гнойных ран , ангин . Однако следует помнить , что йодинол , подавляя рост стрептококков , малоактивный в отношении стафилококков и не действует на грамотрицательные бактерии. Поэтому применение его в хирургии ограничено.

Йодонат ( Iodonati ) – водный раствор смеси Алкилсульфата натрия с йодом. 1% раствор препарата , разведенный 3 раза дистиллированной водой , является эффективным средством для обработки операционного поля.

Йоддицерин ( Ioddicerinum ) – отечественный препарат йода нового поколения, обладает выраженным фунгицидным , противомикробным и противовирусным действием. Выпускают в виде раствора. Основными показаниями к применению препарата является гнойно – воспалительная инфекция ( гнойные раны , язвы , свищи и др.). . Препарат применяют местно на тампонах, турундах , в виде промываний , орошений и др.

2. Окислители.

Раствор пероксида водорода (Solutio Hydrogenii peroxidi diluta) 3% применяют для промывания ран, полостей, как антисептическое
и дезодорирующее средство. Пена, которая образуется на поверхности раны, к тому же удаляет нежизнеспособные клетки.

Перманганат калия (Kalu hypermanganicum) – порошок темно-коричневого или красно-фиолетового цвета, легко растворим в воде. Применяют 0,1-0,5% водный раствор для промывания ран, полостей, ожоговой поверхности. Он является сильным окислителем, обладает бактерицидными и дезодорирующимдействием. В 2-5% концентрации используют как дубильное средство.

Борная кислота (Acidum boricum) – белый кристаллический порошок, разводится в воде, спирте. В 2% водный раствор применяют для промывания ран, особенно при наличии палочки сине-зеленого гноя, может использоваться в виде мази, присыпок.  

3. Красители.

Метиленовый синий (Methylenum coeruleum) – темно-зеленый кристаллический порошок, плохо растворяется в воде, спирте. Ис-
ют в виде 1-3% спиртового раствора при ожогах, гнойных заболеваниях кожи.

Бриллиантовый зеленый (VIRIDЕ nitens). Применяют 0,1-0,2% спиртовый раствор при гнойничковых заболеваниях кожи. Входит в состав жидкости М.В. Новикова, которую используют для обработки микротравм, высыпания на коже.

Риванол (Aethacridini lactas) – желтый кристаллический порошок, обладает противомикробным антикоковым действием, особенно против стрептококка, малотоксичный, не раздражает тканей. Используют для обработки и лечения ран, промывания плевральной, брюшной полости и др. в концентрациях 0,05% (1:2000); 0,1% (1:1000); 0,2% (1:500).

4. Формальдегиды. Вызывают обезвоживание, мумификацию тканей, имеют антисептическое действие.

Формалин (Formalinum) – водный раствор формальдегида. Применяется для обеззараживания инструментария (0,5% раствор). Входит в состав тройного раствора (формалин 20 г, карболовая кислота 10 г, карбонат натрия -30 г на 1000 мл дистиллированной воды). В парах формалина в специальных камерах стерилизуют аппараты с оптической системой.

5. Соли тяжелых металлов.

Ртути дихлорид – сулема (Hydrargiri dichloridum) – белый порошок, растворяется в воде, спирте, является активным антисептиком, с другой – довольно токсическое средство. Применяют для обеззараживания предметов ухода за больными, перчаток в разведении 1:1000.Хранят по списку А в хорошо закупоренных бутылках.

Цианистый ртуть (Hydrargyci oxycyanidum) – сильное антисептическое средство. В концентрации 1:1000 применяют для стерилизации цистоскопов и других инструментов с оптической системой. Растворы 1:10 000 -1:20 000 используют в урологической практике для промывания мочевого пузыря, в очной – при бленнореи, гонореи, конъюнктивитах и ​​др.

Серебра нитрат (Argenti nitras) – прозрачные кристаллы без запаха, хорошо растворяются в воде, спирте. В небольших концентрациях имеет вяжущее, потивовоспалительное и бактерицидное действие. Применяется наружно в виде 2-10% раствора, мази, ляписных карандашей.

6. Детергенты.

Церигель (Cerigelum) – бесцветная вязкая жидкость с запахом спирта. Относится к группе катионных детергентов и имеет большую поверхностную активность. При нанесении на кожу образует пленку, применяется как антибактериальный, антисептический препарат для обработки рук, ран.

Этоний (Aethonium) – белый кристаллический порошок со специфическим действием, хорошо растворяется в воде и спирте. Эффективен в отношении стрептококков, стафилококков и других микроорганизмов. Наряду с этим, вызывает местный обесболивающий эффект, стимулирует заживление ран. Применяют наружно в виде 0,02-1% раствора.  

Диоксидин (Dioxidinum) – зелено-желтый кристаллический порошок без запаха, горький на вкус. Хорошо растворяется в воде, имеет широкий антимикробный спектр действия. К нему чувствительны как аэробы, так и анаэробы. Для наружного применения выпускают в форме 1%, 0,5% водного раствора, для внутривенного – 0,1% раствор.

Димексид (Dimeksidum) – прозрачная жидкость со специфическим запахом, хорошо разводится водой или спиртом. Препарат имеет выраженное бактерицидное, противовоспалительное, обезболивающее действие, повышает чувствительность микрофлоры к антибиотикам. Для наружного применения используют 10-30% раствор.

Препараты имеют специфический механизм и спектр действия. Это, как правило, неорганические (сульфаниламидные препараты) и органические (цефпироматические) соединения, имеющие не только бактерицидное, но и бактериостатическое действие.

1. Сульфаниламидные препараты.

Стрептоцид (Streptocidum) – белый кристаллический порошок, плохо растворяется в воде. Используют для лечения стрептококковой, менингококковой, гонококковой и других инфекций. Внутренне принимают по 0,5-1,0 г 4-6 раз в сутки.

Норсульфазол (Norsulfasolum) – более активный препарат, чем стрептоцид, используют при воспалительных заболеваниях стафилококковой этиологии. Назначают по 0,5-1,0 г через 4-6 ч.  

Сульфадимезин (Sulfadimesinum) – белый порошок, практически не расстворимый в воде. Один из сильных сульфаниламидов, быстро всасывается, малотоксичен, очень активный. Применяют при стрептококковой, пневмококковой, менингококковой и других инфекциях.
Этазол (Aethazolum) – белый с желтоватым оттенком порошок. Практически не растворяется в воде, в спирте – растворяется трудно. Имеет выраженное действие на стрептококки, пневмококки, менингококки, гонококки, кишечную палочку, патогенные анаэробные микроорганизмы. Препарат малотоксичен, быстро всасывается в организме. Назначают по 1,0 г 4-6 раз в сутки. В тяжелых случаях заболевания этазол-натрий применяется в 10-20% растворе (5-10 мл) для внутривенного вливания. Повторное введение рекомендуют через 8 час. Курс лечения 7-10 дней.

Бактрим (Baktrium) – комбинированный препарат, содержащий два действующих вещества: сульфаниламидный препарат сульфаметоксазол и триметоприм. Есть антибактериальным препаратом. Выпускают также под названием бисептол. Назначают по 2 табл. (Для взрослых) 2 раза в день. Препарат быстро всасывается, максимальная концентрация сохраняется в течение 7 час. В последнее время используют сульфисоксазол и сульфаметоксазол.

2. Антибиотики (биологические антисептики) – органические соединения, вырабатываемые в процессе жизнедеятельности организмов. Различают следующие группы антибиотиков:

Группа пенициллина (Penicillinum) имеет широкий спектр действия в отношении к различным микроорганизмам.

Пенициллин растворяется в изотоническом растворе хлорида натрия, 0,25 – 0,5% растворе новокаина. Быстро всасывается и выводится из организма, в связи с чем его необходимо вводить каждые 4-6 часов. В последнее время его применяют реже из-за наличия пеницилиностойких форм бактерий. При длительном применении пенициллина может возникнуть кандидамикоз (грибковое заболевание).

Группа стрептомицина.

Стрептомицин (Streptomycinum) имеет выраженное действие на различную микрофлору и особенно на микобактерии туберкулеза. Вводят внутримышечно в дозе от 500 000 до 1 000 000 ЕД 1-2 раза в сутки.

Стрептоцилин (Streptocillinum) – это смесь бензилпенициллина и стрептомицина, а потому является высокоэффективным препаратом при смешанной инфекции. Назначают по 1-2 раза в день до 900 000 ЕД.

Группа тетрациклинов.

Тетрациклин (Tetracyclinum) применяют для профилактики послеоперационных осложнений, при ожогах, различных гнойных осложнениях. Назначают в виде таблеток по 0,1-0,15 г 4-6 раз в сутки. Максимальная суточная доза – 2 г. Местно может применяться в виде 1-2% мази.
Окситетрациклин (Oxytetracyclinum) по строению и действию близок к тетрациклину. Назначают в виде таблеток по 100 000-500 000 ЕД (0,1 ¬ 0,5 г) на прием 3-4 раза в сутки. Наибольшая доза – 2 г.

Морфоциклин (Morphocyclinum) является синтетическим препаратом, хорошо расстворяется в воде, его действие аналогично тетрациклину. Применяют в случаях, когда необходимо создать высокую концентрацию антибиотика в крови и тканях. Выпускают во флаконах по 0,1; 0,15 г (100 000 и 150 000 ЕД) и вводят 1-2 раза в сутки с 20 мл 5% глюкозы.  

Доксициклина гидрохлорид (Doxycyclim hydrochloridum) – полусинтетический препарат окситетрациклина, имеет широкий спектр действия, однако не действует на синегнойную палочку, протея, грибки, вирусы. Препарат быстро всасывается и медленно выделяется из организма. Употребляют в первые сутки по 0,2 г сразу или по 0,1 г каждые 12 часов. В последующие дни – 0,1 г в день.

Группа аминогликозидов.

Мономицин (Monomycinum) имеет широкий спектр действия. Активен в отношении микрофлоры, устойчивой к тетрациклину, левомицитину, стрептомицина. Вводят внутримышечно по 250 000 ЕД 3 раза в сутки. При длительном приеме может быть неврит слухового нерва, поражение почек.

Колимицин или неомицин сульфат (Colimycinum sulfas) имеет широкий спектр действия. Применяют для лечения гнойных процессов брюшной плевральной полостей, гнойных ран и др.. Устойчивость микробов к колимицина розвиваеться медленно. Принимают по 0,1, 0,25 г в таблетках 2-4 раза в день или внутримышечно по 0,5 г 2 раза в сутки.  

Гентамицина сульфат (Gentamycinи sulfas) обладает бактерицидным действием в отношении многих грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, в том числе – протея, кишечной палочки и др.. Резистентность развивается свободно. Препарат быстро всасывается, однако имеет ото-и нефротоксическое действие. Выпускается во флаконах и ампулах 0,08 (80 мг) и 0,04 (40 мг).

Амикацин (Amikacinum) – один из наиболее активных антибиотиков аминоглюкозидов, полученный полусинтетическим путем. Имеет широкий спектр действия. Особенно эффективен в отношении грамотрицательной инфекции. Применяют для внутримышечного или внутривенного введения по 100 или 500 мг 2-3 раза из расчета 10-15 мг / кг в сутки.  

Антибиотики-макролиды в своей структуре имеют лактонное кольцо.

Эритромицин (Erythromycinum) по спектру действия близок к пенициллинам, однако лучше переносится. Принимают в таблетках по 0,1, 0,25 г (100 000 – 250 000 ЕД) каждые 4-6 часов. Суточная доза – 2 г.

Группа левомицетина. Левомицетин (Laevomycetinum) – синтетический препарат широкого спектра действия. Назначают в таблетках за 20-30 мин до еды 3-4 раза по 0,25 или 0,5 г, в капсулах – по 0,1, 0,25 и 0,5 г. Для внутренного вливания применяют 1% раствор : растворяют 0,25 или 0,5 г препарата, соответственно, в 25 или 50 мл воды для инъекций. Можно вводить капельно с 5% раствором глюкозы, 0,9% раствором хлорида натрия.
Синтомицина (Syntomycinum) – активным веществом является левомицетин. Применяют наружно в виде 1-5-10% эмульсии для лечения гнойных, ожоговых ран, язв и др..

Группа рифамицинов – это группа антибиотиков, полученных естественным и полусинтетическим способом.

Рифамицин (Rifamycinum) обладает выраженным антибактериальным действием, включая штаммы, устойчивые к другим антибиотикам. Активен в отношении туберкулезной палочки. В больших концентрациях действует на кишечную палочку. Назначаетсяют для внутримышечного и внутривенного вливания в дозе 0,5-1,5 г 2 раза в сутки.  

Группа цефалоспоринов.

В основе структуры этих антибиотиков – 7-аминоцефалоспоринова кислота. Имеют широкую и выраженное антибактериальное действие. Цефалоспорины разделяют на I, II, III, и IV поколения (генерации). Наиболее часто используют:
Цефазолин (Cephazolinum). Выпускается в виде соли натрия. Вводят препарат внутримышечно в дозе 0,25-0,5 г, разведенный в изотоническом растворе хлорида натрия или внутривенно 5% растворе глюкозы.

Цефалексин (Cephalexinum) оказывает выраженное действие на грамположительных и грамотрицательных микробов. Однако малоэффективен против протея, синегнойной палочки. Назначают в таблетках по 0,25-0,5 (суточная доза – 1-2 г) 3-4 раза в сутки.  

Максипим (Macsupimum) имеет широкий спектр и выраженное действие против грамположительных и грамотрицательных патогенных микроорганизмов как аэробных, так и анаэробных. Лечение максипимом можно начать, не дожидаясь результатов анализов на чувствительность. Обычная доза для взрослых – 1 или 2 г каждые 12 часов.  

Тиенам (Thienаm) – в-лактамный антибиотик с широким спектром действия грамположительных и грамотрицательных патогенных микроорганизмов, аэробных и анаеробних, устойчивых к другим антибиотикам. Антибактериальный спектр действия препарата Тиенам значительно шире, чем у любого другого антибиотика, что позволяет использовать его при лечении полимикробных, смешанных аэробных и анаеробних инфекций. Тиенам выпускается в двух формах: для внутримышечного и внутривенного введения. Флаконы содержат по 500 мг и 750 мг. Растворяют в 2 мл и 3 мл воды для инъекций или физиологического раствора хлорида натрия. Назначают по 2-3 г в сутки. Внутримышечные формы препарата не должны использоваться для введения. Наличие значительного количества антибиотиков дает возможность использовать их в различных комбинациях. При этом следует учитывать характер их совместного действия. На сегодня разработаны специальные схемы совместимости антибиотиков.

Ошибки и опасность антибиотикотерапии.

Основной ошибкой и опасностью антибиотикотерапии является неправильный выбор. Назначение антибиотика должно основываться на определении чувствительности высеянных микроорганизмов и проводиться в виде монотерапии. Комбинация антибиотиков назначается только при наличии смешанной микрофлоры. При назначении антибиотиков широкого спектра действия можно наблюдать аллергические или токсические реакции и развитие дисбактериоза. Нельзя использовать антибиотики с истекшим сроком действия, и антибиотики, которые хранились с нарушением инструкции. Перед назначением необходимо определить чувствительность к антибиотику.

Для этого используют следующие пробы:

Внутрикожная проба. На внутренней поверхности предплечья внутрикожно вводят 1000 ЕД антибиотика, растворенного в 0,1 мл изотоническом растворе хлорида натрия. Для контроля используют такое же количество изотонического раствора хлорида натрия, но без антибиотика. В больных с повышенной чувствительностью в месте введения антибиотика наблюдаетсягиперемия, отек, сыпь.

Кожная проба с помощью скарификации. На внутренней поверхности предплечья, после обработки 70 ° спиртом, наносят одну каплю исследуемого антибиотика, разведенного физиологическим раствором хлорида натрия (1 ЕД на 1 мл при аллергическом анамнезе и 50 ЕД на 1 мл при его отсутствии) и проводят скарификацию. Результат оценивают, как и при проведении внутрикожной пробы.

Подъязычная проба. Больному на маленьком марлевом шарике дают 1/4 -1 / 3 дозы исследуемого медикамента под язык. При положительной реакции через 10-20 мин. наблюдают отек уздечки языка, слизистой оболочки рта, губ. При положительной реакции антибиотик вводить нельзя.

У больных с повышенной чувствительностью к антибиотикам могут возникать аллергические реакции в виде сыпи, покраснения кожных покровов, дерматитов, крапивницы, ангионевротического отека (отек Квинке), ринитов, бронхитов и др.. При их возникновении необходимо отменить антибиотик и назначить антигистаминные препараты (димедрол, супрастин, пипольфен, диазолин, кетотифен), в тяжелых случаях – гормональные препараты (гидрокортизон, преднизолон и др.).. При применении антибиотиков без определения чувствительности больных часто возникает анафилактический антибиотиковой шок.  

Анафилактический антибиотиковой шок проявляется снижением артериального давления, потерей сознания, отеком лица, крапивницей, иногда рвотой, поносом. В тяжелых случаях наблюдают расстройства дыхания (одышка), кишечные кровотечения, поражения печени, отек мозга, коматозное состояние. Смерть может наступить в первые минуты или часы после введения антибиотиков.

Лечение. Больному срочно необходимо ввести 0,2% раствор норадреналина или 0,1% раствор адреналина в дозе 0,5-1 мл подкожно или внутримышечно. В тяжелых случаях вводят 5 мг норадреналина на 500 мл изотонического раствора хлорида натрия, вместе с 75-100 мг Гидрокортизона или 50-100 мг преднизолона, 1 мл 1% раствора мезатона, 10 мл 10% раствора хлорида кальция. При отеке гортани и нарастании одышки проводят интубацию трахеи, трахеостомию, искусственное дыхание, вводят внутривенно 10 мл 24% раствора эуфиллина, 1 мл 2,5% раствора димедрола, мочегонные (лазикс). При применении любого антибиотика, особенно в больших дозах, может возникать токсическое действие на отдельные органы и системы. Клинически она может проявляться расстройствами слуха, вестибулярного аппарата, зрительного нерва, центральной нервной системы, желудочно-кишечного тракта и др..

Кандидозы вызываются дрожжеподобными грибками рода Кандида. Длительное применение антибиотиков нарушает обычное соотношение между различными представителями микрофлоры (подавляется рост бактерий и усиливается размножение дрожжеподобных грибков). При этом поражаются слизистые оболочки, кожа, внутренние органы (дыхательные пути, желудочно-кишечный тракт, мочеполовая система и др.)..
Лечение. Для лечения кандидоза назначают противогрибковые препараты – нистатин по 500 000 ЕД 3-4 раза в сутки или леворин по 1 капсуле (500 000 ЕД) 2-3 раза в сутки, амфотерицин 250 ЕД / кг внутривенно (этот препарат особенно эффективен при лечении грибковых заболеваний, не поддающихся лечению другими противогрибковыми препаратами), гризеофульвин. В последнее время появились новые противогрибковые препараты – низорал и дифлюкан (флуконазол).

Ферменты. В хирургии применяют и препараты, имеющие протеолитическую (расплавляют белки) действие: трипсин, химотрипсин, панкреатическая рибонуклеаза, коллагеназа, еластолитин, терилитин и др.. Эти препараты имеют свойство расплавлять некротизированные ткани, фибринные образования, разжижать вязкое содержание раны, сгустки крови. Относительно здоровых тканей эти ферменты являются неактивными. Их широко используют для лечения гнойных, некротических ран.

Фитонциды – препараты, содержащие растительные биологически активные вещества, которые обладают выраженным противомикробным, как бактерицидным, так и бактериостатическим действием. Их изготавливают из листьев эвкалипта, зверобоя, маклеи сердцеподобной и других растений. Широкое применение получили такие препараты как хлорофиллипт, новоиманин, эктерицид, настойка календулы, чеснока и др.. Их используют в основном для лечения гнойных ран, промывания полостей, а также для ингаляций при заболеваниях дыхательных путей.

Основные принципы асептики

Введение асептики открыло новую эру в развитии хирургии. На сегодня асептика остается одним из основных фундаментов, на который опирается современная хирургия. Благодаря развитию асептики у хирургов появилась возможность расширить диапазон оперативных вмешательств, проводить трансплантацию органов и тканей. Методика асептики была разработана в 80-90-х годах прошлого века Е. Бергманом и его учеником Е. Шимельбушем.

Под асептикой (a – без, sepsis – гниение) следует понимать комплекс профилактических методов, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, создание безмикробных, стерильных условий для хирургической работы посредством использования организационных мер, технических средств, химических и физических факторов . На сегодня асептический метод хирургической работы сочетается с использованием различных антисептических препаратов.

Основной целью асептики является уничтожение микробов на всех предметах, инстру-ментах, перевязочных материаллах и др.., что может контактировать с раной или может быть введено в организм при обследовании или лечении. Следует помнить, что все, что контактирует с раной, должно быть чистым и свободным от микробов (стерильным).

Источники и пути распространения инфекции в хирургии

Воздушно-капельная инфекция и ее профилактика. Важное значение в предупреждении нагноений в ранах профилактика воздушно-капельной инфекции. Сегодня доказано, что количество нагноений операционных ран находится в прямо пропорциональной зависимости от степени микробного загрязнения воздуха операционной. Под воздушной инфекцией следует понимать микроорганизмы, которые находятся в воздухе и могут попадать в рану. Количество микробов в воздухе пропорциональна его загрязненности. Борьба с запыленностью и загрязненностью воздуха в операционных и перевязочных является основой профилактики воздушной инфекции. Большое значение в борьбе с инфекционным загрязнением имеет своевременную уборку операционной, кондиционирования воздуха, облучение ультрафиолетовыми лампами, соблюдение противомикробного режима.
Под капельной инфекцией следует понимать микроорганизмы, которые распространяются и передаются другому человеку при разговоре, кашле, чихании. Для защиты раны от капельной инфекции применяют маски. Следует помнить, что при разговоре капельки слюны могут разлетаться на расстояние 1,5-2 м и медицинский персонал может быть источником заражения больных. В слюну попадает инфекция при наличии кариозных зубов, тонзиллита, нагноительных процессов рта, носа. Для профилактики капельной инфекции проводят комплекс мероприятий: Всех больных, в том числе и медицинских работников, с повышенной температурой тела, катаральными явлениями со стороны дыхательных путей в операционного не допускают. Все работники, участвующие в операциях, независимо от занимаемой должности, должны периодически обследоваться у ЛОР-вра-ря с обязательным бактериологическим контролем рото-и носоглотки. При наличии у обследованных в посевах патогенных микробов (бацилланосители) проводят соответствующее лечение (санация). Обязательным является ношение маски, закрывающей рот и нос. Сегодня доказано, что маска из четырех слоев марли задерживает 90-94% микроорганизмов. Маска из шести слоев задерживает до 97% бактерий. Для уменьшения проникновения капель слюны между слоями марли дополнительно следует помещать прокладки из ваты.

 

 

Контактная инфекция и ее профилактика. Под контактной инфекцией следует понимать инфицирования раны через предметы: перчатки, инструменты, перевязочный материал, иглы и др.., Руки хирурга и его помощников. Основным способом профилактики контактной инфекции является дезинфекция и стерилизация, которую проводят с помощью химических и физических методов. 

Имплатацийна инфекция и ее профилактика. Возникает из шовного материала, костных фиксаторов, дренажей и др.. которые инфицированные и попадают в рану при выполнении операции или вследствие нарушения правил их стерилизации. Согласно приказу МЗ Украины № 120 от 25.05.2000 г. с целью профилактики ВИЧ-инфекций, вирусных гепатитов В и С, нозокоминальные инфекции все медицинские изделия, инструментарий, применяемые для различных манипуляций и операций, должны подвергаться дезинфекции, предстерилизационной обработке и стерилизации .Ответственным за проведение дезинфекции, предстерилизационной обработки и стерилизации есть старшая сестра операционного блока.

 

Дезинфекция

Под дезинфекцией следует понимать комплекс мероприятий направленных на снижение патогенных и потенциально патогенных для человека микроорганизмов на инструментах, предметах окружающей среды. Все инструменты (канюли, пинцеты, скальпели, катетеры, кровоостанавливающие зажимы, ножницы и др.) после их использования разбирают и погружают в 3% раствор хлорамина, расствор бодефена, микробака на 60 мин, если инструментарий загрязненный кровью его погружают в 1% раствор бензоата натрия на 1 час, или в 4% раствор перекиси водорода на 90 мин. Дезинфекционный раствор применяют однократно.

 

Предстерилизационной обработка инструментов

После дезинфекции медицинский инструментарий промывают проточной водой над раковиной до полного удаления загрязнений дезинфицирующего средства. Промытый и продезинфицированный медицинский инструментарий замачивают в горячем (50-55 ° С) моющем растворе (моющее средство “Биолот”, “Лотос” или “Ари-эль” – 5 г порошка, 170 мл 3% раствора перекиси водорода на 825 мм дистелированной воды) в течение 15 мин при полном погружении изделий. Температуру раствора в процессе замачивания не поддерживают. После чего моют в рабочем растворе из расчета 30 с на один инструмент. Очищенный и вымытый медицинский инструмент ополаскивают сначала под проточной водой, а затем в дистиллированной воде. Промытый медицинский инструментарий оставляют и сушат горячим воздухом в сухожаровом шкафу при температуре 85 ° С до полного исчезновения влаги.

Качество очистки изделий от биологического загрязнения в последнее время вместо бензидиновой, ортотолуидинового и амидопириновой проб проверяют с помощью пробы с “Гемотест-м” или с реактивом азопирама, препера-ту “Факел” -2. Контролю подлежит 1% одновременно обработанных инструментария. Наличие остатков моющих средств на изделиях определяют путем постановки фенолфталеиновой или азопирамовых проб.

Проба с “Гемотест-м”. Сначала готовят рабочий раствор, который состоит из смеси щелочного раствора хромогена (реактив 1) и пероксида водорода (реактив 2). На исследуемый инструмент наносят несколько капель рабочейго раствора или протирают поверхность изделия тампоном смоченным в растворе. При наличии остатков крови возникает фиолетово-синяя окраска.

Проба с азопирамом. Перед проверкой качества очистки инструментария готовят рабочий раствор, смешивая равное количество азопирама с 3% раствором перекиси водорода (1:1). Рабочий раствор должен быть использован в течении 1-2 часа, при появлении спонтанной розовой окраски его меняют. На исследуемый инструмент наносят несколько капель рабочего раствора или протирают поверхность изделия тампоном смоченным в растворе. При наличии следов крови на загрязненных участках инструментов (изделий) появляется фиолетовая окраска, которая в течение нескольких секунд превращается в розово-синее или бурый. С помощью азопирама выявляют наличие гемоглобина, пероксидаз растительного происхождения, окислителей (хлорамина, хлорной извести, моющих средств, ржавчины, кислот и др.. Бурая окраска наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины и хлорокислителя. Исследование проводят при комнатной температуре (не выше +25 ^оС).  

 

Проба с препаратом “Факел-2”. Препарат представляет собой порошок белого цвета, выпускается в пластмассовых ампулах (1000 проб). Для проведения пробы на остатки крови готовят рабочий раствор. Открывают крышку ампулы (дозатор) и на нее насыпают 0,02 г препарата, который растворяют в 10 мл кипяченой воды. При этом получают 0,2% раствор реактива Ф-2. В раствор добавляют 1 мл 3% раствора перекиси водорода (соотношение 1:10). На исследуемый предмет (инструмент) наносят несколько капель раствора или его протирают смоченным тампоном. При наличии следов крови раствор препарата Ф-2 приобретает розовый или вишневого окраску. Время наблюдения – 5 мин. Рабочий раствор используют в течение 30 мин.

 

Фенолфталеиновой проба. Готовят 1% раствор фенолфталеина и наносят на вымытый предмет 2-3 капли раствора. При наличии моющего раствора появляется розовая окраска.

Стерилизация

Под стерилизацией следует понимать комплекс физических и химических средств полного обеззараживания инструментов, приборов, аппаратов и другихпредметов медицинского назначения. Для этого в основном используют прожаривание, пастеризацию, кипячение, сухожаровой метод (160-200 ° С), автоклавирование.

Прожарка.

Этот метод стерилизации можно использовать в ургентных ситуациях, когда срочно необходимо приготовить отдельные инструменты: иглодержатель, иглы, зажимы и др.. Однако следует помнить, что при прожаривании не достигается надежное обеззараживание, кроме того, этот способ стерилизации портит инструментарий.

Пастеризация – метод обеззараживания органических жидкостей с помощью температуры 60-100 ° С, при которой погибают только вегетативные формы микробов. Ее используют в основном при изготовлении белковых препаратов, питательных сред путем повторного нагрева до 55-60 ° С в течение 30 мин.

 

Кипячение применяют теперь реже, только в небольших лечебных учреждениях. Инструменты, которые были в использовании, после дезинфекции и передстерилизацийной обработки помещаются в специальный металлический стерилизатор с сеткой и крышкой, плотно закрывается.

В стерилизатор наливают воду и добавляют гидрокарбонат натрия для получения 2% раствора. Жидкость доводят до кипения, погружают в нее разобранные и поставленные на сетке инструменты. Когда вода снова закипит, отмечают время начала стерилизации. По окончании стерилизации сетку с инструментами вынимают из кипятильника, инструменты раскладывают на накрытом стерильной простыней инструментальном столике. Сроки стерилизации следующие: металлические инструменты – 20 мин, резиновые предметы – 10 мин. Режущие инструменты лучше кипятить без добавления соды в течение 5 мин, предварительно укутав режущую часть марлей. Кипячение шприцев и игл в медицинских учреждениях допускают только в исключительных (военных) ситуациях. Медицинские работники должны помнить, что такой вид стерилизации как кипячение, не является совсем надежным, поскольку вирусы ВИЧ-инфекции, гепатита и споры отдельных бактерий могут выдерживать даже длительное кипячение.

 

 

 

Стерилизация паром под давлением.

Этот метод в основном используется для стерилизации перевязочного материала, белья при температуре 120 –132 ° С. Стерилизацию парой под давлением проводят в специальных аппаратах-автоклавах. Давление пара в автоклаве контролируется манометром и специальным предохранительным клапаном, через который автоматически сбрасывается ее избыток, что позволяетподдерживать соответствующее давление и температуру внутри автоклава. При давлении пара 1 атм стерилизация происходит при температуре 120 ° С, срок стерилизации – 45 мин. При давлении пара 1,5 атм температура в автоклаве повышается до 127 ° С, срок стерилизации сокращается до 30 мин. При давлении 2 атм температура внутри аппарата достигает 132 ° С, а срок стерилизациипри этом равна 20 мин.

 

Материал для стерилизации кладут в специальные коробки (биксы), которые используют для стерилизации различных предметов и последующего их хранения.

 

Биксы, как правило, круглой формы и различной емкости, изготовленные из нержавеющей стали. Закрываются крышкой и специальным замком. По периметру биксов есть малые отверстия, через которые внутрь попадает пара. К ручке замка прикрепляют специальную бирку, на которой записывают дату стерилизации, материал и его вид. После окончания стерилизации материал считается стерильним в течении 72 час.

 

Теперь выпускают специальные стерилизационные коробки (биксы) с антибактериальными фильтрами (КСПФ), в которых срок хранения стерильного материала продолжается до 1 месяца. Следует помнить: если стерильный бокс открывается, его содержание нужно использоть в течение одного дня.

Стерилизацию инструментария, шприцов проводят под давлением пара 1,5 атм в течение 30 мин. Резиновые трубки, катетеры, дренажи перед стерилизацией выдерживают в течение 1 ч в 1% растворе хлорамина или хлорациду, диоксидина, промывают водой и высушивают, заворачивают в марлю и стерилизуют при давлении 1 атм 45 мин. В последнее время используют резиновые изделия только однократного пользования (дренажи, трубки, катетеры, перчатки), которые стерилизируют в заводских условиях.

Для оценки стерильности материала после автоклавирования используют различные химические вещества, изменяющие свои физические свойства при 120-132 ° С (порошок серы (117 ° С), антипирин, амидопирин (110 ° С), резорцин (119 ° С) , бензойную кислоту (121 ° С), мочевину (132 ° С). В последнее время выпускают стандартные индикаторные трубки и специальная термоиндикаторная бумага, которая меняет свой цвет в зависимости от температуры и экспозиции.

При отсутствии стандартного индикатора его изготавливают самостоятельно. Вещество насыпают в небольшую пробирку, затыкают куском ваты или марлевым шариком и помещают среди предметов, подлежащих стерилизации. Если индикатор не изменился (не расплавился, не изменил цвета), то стерилизация не состоялась и материалом пользоваться нельзя.

Стерилизация сухим жаром (воздушная стерилизация).

 

Металлический инструментарий лучше стерилизовать сухим жаром. Сухожаровые шкафы работают от электричества. Хирургический инструментарий, отобранный для соответствующей операции, кладут на металлические сетки и помещают в стерилизатор. Шкаф закрывают и включают электронагревательный прибор. За 10-15 мин температура внутри шкафа достигает 160 ° С. При помощи регулятора она может достигать 200 ° С. Продолжительность стерилизации зависит от температуры: при 160 ° С – 150 мин; 180 ° С – 60 мин, 200 ° С – 15 мин.

 

Для контроля стерилизации в сухожаровых шкафах используют левомицетин (температура плавления 150-160 ° С); сахарозу и винную кислоту (180 ° С); гидрохинон, тиомочевину (более 180 ° С). Удобный промышленный индикатор – запаянные трубки с порошком сахарозы и винной кислоты, который при 180 ° С превращается в жидкость. Сухожаровые шкафы устанавливаются в стерилизационных комнатах рядом с операционной. В таких шкафах можно стерилизовать несколько наборов различного инструментария.

 

Газовая стерилизация.

 

Применяют в основном для стерилизации изделий из полимерных материалов (эндоскопы, изделия из пластмассы). Газ, который используется для стерилизации, является окись этилена. Этот газ опасен, может взрываться, а потому его проще использовать в смеси с двуокисью углерода, бромидом метила.

Оптические устройства и детали к ним можно стерилизовать в парах формалина. Для этого в специальный герметический стеклянный или пластмассовый цилиндр (камеру) на дно кладут 2-3 таблетки формалина (параформ) или наливают 10-20 мл формалина. Стерилизацию проводят в течение суток.

 

Промышленность выпускает специальные газовые стерилизаторы. После окончания стерилизации материал помещают в вентиляционную камеру.

 

Стерилизация с помощью растворов (химическая стерилизация).

 

Режущий инструментарий (скальпели, ножи, ножницы, лезвия, иглы), а также резиновые изделия, что портятся при нагревании, можно стерилизовать в растворах. Для подготовки инструментария, как правило, используют 96 ° этиловый спирт. Инструменты заливают спиртом за два часа до начала операции.

 

В отдельных случаях для стерилизации резиновых изделий (перчаток, катетеров, дренажей) используют диоцид (1:3000), 2% раствор хлорамина, новосепт, рокал и др.

Лучевая стерилизация.

При этом методе стерилизации используют ультрафиолетовое облучение или g-лучи. С помощью g-лучей сте-рилизують шовный материал, эндопротезы, катетеры и др.. Лучевая стерилизация достаточно надежна. Предметы могут храниться в герметичной упаковке стерильными в течение многих месяцев.

 

 

Контроль стерилизации

Контроль стерилизации материала, инструментария осуществляется показателями манометров, термометров, веществ индикаторов, которые меняют свои физические свойства в зависимости от температуры и срока стерилизации а также бактериологическим методом, который является наиболее верным и с помощью которого можно определить вид микробов.

Посевы на стерильность хирургического инструментария. Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают из бикса или мягкой упаковки и полностью помещают в пробирки с питательной средой. Как исключение, в отдельных случаях, если все простерилизованные инструменты в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели, Ранорасширители и т. д.), проводят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или стерильной проточной водой и помещают сер-ветку в пробирку с тиогликолевой средой. Аналогичные смывы с других инструментов засевают в пробирки со средой Хоттингера и Сабуро.

Посев на стерильность катетеров, резиновых перчаток и других изделий из резины и пластикатов. Контроль стерильности зондов, катетеров, резиновых перчаток и других изделий из резины производят путем полного погружения мелких изделий в питательную среду, от больших отрезают небольшие кусочки (1-2 см) и помещают в питательную среду.

Результаты посева можно получить через 48-72 час. Такой контроль необходимо проводить 1 раз в месяц с соответствующей регистрацией.

Подготовка рук к операции

Медицинский персонал должен тщательно следить за чистотой своих рук, избегать их загрязнения. При наличии ссадин, царапин, а тем более гнойных заболеваний участвовать в операции категорически запрещают. Не допускается маникюр, ногти должны быть коротко подстрижены. Рекомендуется на ночь смазывать руки вазелином, ланолином или кремом для рук.

 

Существует несколько традиционных (классических) и современных методов обработки рук.

Распространенным традиционным является метод Спасокукоцкого-Кочергина. В два сухих тазы для мытья рук наливают по 5 мл 96 ° спирта и обжигают их поверхность. Затем в обе тазы наливают по 2 л дистиллированной воды и добавляют 10 мл чистого нашатырного спирта. В таком растворе моют руки с помощью салфеток поочередно по 3 мин. Предварительное обмывание рук щетками не обязательно, его проводят только при загрязнении. Затем руки высушивают стерильным полотенцем или салфетками и течении 5 мин обрабатывают салфетками, смоченными 70 ° или 96 ° спиртом. Межпальцевые промежутки и ногти дополнительно смазывают 5% спиртовым раствором йода (йодонатом).

 

Способ Фюрбрингера заключается в мытье рук проточной водой двумя щетками в течение 5 мин каждой. После этого руки вытирают стерильными салфеткамы или полотенцем и обрабатывают поочередно 15% раствором дихлорда ртути (сулемы) в течение 3 мин. Кончики пальцев смазывают 5% спиртовым раствором йода (йодонатом).

Способ Альфельда. Из всех других этот метод применяют чаще. Руки моют двумя стерильными щетками теплой проточной водой с мылом в течение 10 мин, после чего вытирают стерильным полотенцем и обрабатывают 96 ° спиртом в течение 5 мин, ногтевые ложа смазывают 5% спиртовым раствором йода (йодонатом).

 

Из современных методов обработки есть несколько способов:

Обработка рук хлоргексидином (гибиталом). Гибитал выпускают в виде 20% водного расствора по 500 мл. Для мытья рук используют 0,5% спиртовой раствор. Для этого препарат разводят в 70 ° этиловом спирте в соотношении 1:40. После обычного гигиенического мытья рук теплой водой с мылом, руки вытирают стерильной салфеткой, а затем два раза обрабатывают в течении3 мин. салфетками, смоченными в растворе. Дополнительная обработка спиртом ненужна.

Обработка дегмицидом. Применяют 1% раствор дегмицида в концентрации 1:30 (1 часть препарата и 29 дистиллированной воды). Обрабатывают, как хлоргексидином.

Обработка рук надмурашыной кислотой. Способ приготовления 30% пероксид водорода (172 мл) и 85% муравьиной кислоты (81 мг) поочередно сливают в стеклянную бутылку, перемешивают и помещают в кастрюлю с холодной водой на 1-1,5 час. После охлаждения этот раствор разводят водой (можно водопроводной) до 10 л. Раствор должен быть использован в течение суток. В пяти литрах рабочего раствора могут мыть руки 10 – 11 человек. Сначала руки моют 1 мин проточной водой с мылом (без щеток), а затем в течение одной минуты – в растворе надмурашиной кислоты (без салфеток). После мытья рук с одним из вышеуказанных методов их вытирают насухо стерильными салфетками, одевают стерильную маску, халат и перчатки.

 

Использование резиновых перчаток позволяет обеспечить полную стерильность рук во время операции. Сегодня перчатки широко используют не только во время операций, перевязок, но и при обследовании больных. Для профилактики хирургических инфекций важное значение имеет реглярный контроль за стерильностью рук членов операционной бригады. С этой целью один раз в 15-20 дней до начала операции проводят посев из рук хирургов и операционных сестер.

 

 

Обработка операционного поля

Операционное поле – место действия хирурга, должно быть без микроорганизмов. Непосредственно перед операцией выбритое операционное поле обробяють методом Гросиха-Филончикова. Суть его заключается в том, что кожу операционного поля обрабатывают 4 раза одним из антисептиков. В последнее время чаще всего пользуются раствором йодоната. Его готовят перед операцией (ex tempore): концентрированный 5% раствор йодоната растворяют кипяченой или стерильной водой в соотношении 1:5. Первое смазывание кожи операционного поля осуществляют после предыдущего ее мытья бензином или спиртом, протирают два раза стерильными тампонами, смоченными раствором йодоната. Второе – перед разрезом, после покрытия больного стерильными простынями, третье – перед зашиванием кожи и четвертое – после наложения швов на кожу. Кроме этих обязательных четырех обработок, кожу операционного поля следует смазывать каждый раз, когда меняют белье вокруг раны (загрязнение, расширение раны и др.). Операционное поле можно обрабатывать и 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина, надмурашиной кислотой, дегмицидом, Кутасептом, 1% раствором рокала и др.. Для изоляции кожи операционного поля применяют специальные пленки (протекторы) или прокладки, изготовленные из клеенки. При наличии гнойничков в области операционного поля от плановых операций необходимо удерживатся.

 

Стерилизация шовного материала

В хирургии применяют различные по своим физическим свойствам, химической структуре и источникам происхождения шовные материалы: шелковые, хлопчатобумажные нитки; синтетические нити, которые не рассасываются (капрон, лавсан, тефлон и др..) Синтетические нити, рассасывающиеся, с гликолевой кислоты и оксицелюлозы (дексон, окцелон, полипропилен) металлические из нержавеющей стали, тантала (скрепки, провод), а также биологические нити рассасывающиеся (кетгут). В связи с их различными физико-химическими свойствами способы стерилизации шовных материалов не могут быть одинаковыми. Некоторые виды их (шелк, хлопчатобумажные нитки, лавсан и др.). стерилизируют в автоклаве под давлением в 1 атм в течение 20-30 мин.

Шелк чаще стерилизуют по методу Кохера.Суть его заключается в следующем: после мытья и высушивания мотки нитей с шелка помещают в банку с притертой пробкой на 24 часа в эфир для обезжиривания, а затем на такой же срок – в 70 ° спирт. Шелк после этого укладывают в кастрюлю, заливают 0,5% раствором дихлорида ртути (сулемы) и кипятят в течение 10 мин. Затем перекладывают в стерильную банку с притертой пробкой, наполненную 96 ° спиртом, в которой и хранят. Стерильность шелка проверяют бактериологическим методом. Перед использованием шелк кипятят 2 мин в 0,5% растворе дихлорида ртути.

Однако в хирургической работе следует отдавать предпочтение шелку, который просто-рилизированный в заводских условиях и хранится в стеклянных запаянных ампуллах. На сегодня почти полностью заменен синтетическими шовными материаллами.
Стерилизацию синтетических нитей, как тех, которые не рассасываются, так и рассасывающиеся, проводят кипячением в воде в течение 20-30 мин, или в растворе сулемы 1:1000 в течение 1-5 мин. Затем стерилизируют и хранят их в 96 ° спирте в стеклянных банках с плотно притертыми пробками. Металлический шовный материал (скобки из нержавеющей стали, скрепки из тантала, клипсы, провод) также стерилизируют кипячением в 2% растворе гидрокарбоната натрия.

Стерилизация биологического шовного материала, который рассасывается (волокна) сложная и требует особой тщательности из-за опасности загрязнения его анаэробной микрофлорой. Она осуществляется химическим методом.

Предварительно кетгут помещают на 24 ч в эфир для обезжиривания, затем стерилизуют по методике Клаудиуса, Губарева, или Ситковского.

По методу Клаудиуса кетгут в мотках помещают в водный раствор Люголя (1 г кристаллического йода, 2 г калия йодида и 97 г воды) на 9 суток, после чего проверяют на стерильность бактериологическим методом. Если материал окажется стерильным, раствор из банки сливают и кетгут заливают 96 ° спиртом, в котором он и хранится. Если же кетгут окажется нестерильным, его снова заливают водным раствором Люголя на 9 суток, после чего прове ряют на стерильность.

Сегодня широкое распространение получила модификация стерилизации кетгута по А.П. Губареву, который предлагает использовать спиртовой рассвор Люголя. При этом продолжительность стерилизации сокращается до 7 суток.

Способ Ситковского позволяет подготовить кетгут быстрее, однако материал при этом сильно портится, становится грубым, ломкими. В банке с притертой пробкой насыпают кристаллический йод (40 г на 1 банку емкостью 3 л и 60 г – 5 л). Смотан в кольца кетгут подвешивают в банке на высоте 6-7 см от ее дна. Банку закрывают притертой пробкой и заливают парафином. Периодически банку нужно встряхивать для лучшего распределения паров йода между кетгутом. Через 3-4 суток кетгут проверяют на стерильность (посев) и при отсутствии микрофлоры его переносят в сухую стерильную банку, где и хранят герметически закритим. Перед стерилизацией сухим методом кетгут целесообразно опустить на 1-2 мин в 2% раствор йодида калия. После такой обработки он лучше реагирует на пары йода. Учитывая сложность стерилизации, следует пользоваться кетгутом, изготовленным в заводских условиях.

Стерилизация перевязочного материала и белья

Основной вид перевязочного материала, используемого в операционной – белаягигроскопическая марля. Вата имеет ограниченное применение. Заготовка перевязочного материала. Марля должна быть белой, мягкой, гигроскопичной и обезжиренной. Ширина фабричных кусков марли -60-70 см. Перевязочный материал готовят на чистом столе, тщательно вымыв руки. Основное правило составления перевязочного материала-обязательное подвертание краев марли внутрь для предотвращения попадания мелких ниточек в рану.

Для хирургической работы готовят салфетки трех размеров: большие, средние и малые. Большие салфетки складывают из кусков марли размером 40х60 см, средние – 37,5 х30 см, малые – 20х15 см.

Готовят их следующим образом: от общего куска берут 10-12 слоев марли и разрезают ее ножницами по линиям, указанным на схеме. Из них готовят большие салфетки. Середину большого куска также разрезают вдоль поперечных нитей марли на три ровные полоски, которые в свою очередь разрезают дважды пополам. Полученные куски размером 20х15 см используют для приготовления малых салфеток. При этом с одного края обрезают полоску шириной 20 см, из которой готовят большие салфетки, с другой – полоску шириной 5 см, применяемые для шариков. Середину куска марли, оставшуюся режут на половину: один раз в продольном, второй – в поперечном направлении. Из полученных кусков готовят средние салфетки. Большие сворачивают в следующем порядке: оба обрезанных края на глубину 5-6 см заворачивают всередину, затем марлю еще раз складывают пополам. Свертывание средней салфетки начинают соскручивания трех сторон (разрезанные края): внутрь на глубину 3-5 см, затем салфетку складывают пополам сначала вдоль поперечной, а затем вдоль продольных линий.В кусках марли, из которой составляют малые салфетки, все стороны образованы разрезанными краями, поэтому все они должны быть завернуты внутрь салфетки. Первыми скручивают края больших сторон с таким расчетом, чтобы они заходили несколько друг на друга, затем свободные края меньших сторон Скручивают внутрь так, чтобы они соприкасались друг с другом, и салфетку окончательно складывают пополам. С тех самых кусков марли готовят большие, средние и малые тампоны. Большой тампон готовят следующим образом: подрезаны края марли заворачивают внутрь на глубину 5-6 см и в том же направлении дважды складывают пополам. Полоску, которая образовалась, длиной 60 и шириной до 10 см составляют почти вдвое: нижняя половина должна быть на 5-6 см длиннее верхней. Затем там пон составляют еще раз пополам. Свободный край нижнего слоя марли заворачивают на тампон. Средний тампон готовят так же: образованную полоску складывают вдоль поперечной нити, а потом-по продольной. Средний тампон может быть сделан сестрой во время операции по средней салфетки. Составление малого тампона начинают с заворачивания внутрь на 1-2 см одного из коротких краев куска марли, затем скручивают всередину с некоторым заходом друг на друга длинные края с повторным сворачиванием их пополам в продольном и поперечном направлении.

Шарики готовят из куска марли размером 10х10 см; складывая их вдвое и обвивая вокруг указательного пальца, образуют шарик, внутрь которой заворачивают свободные концы. Турунды, или полоски, делают из кусков бинта шириной 5 и длиной 40-50 см. Концы бинта окучивают внутрь на 1-1,5 см, затем его края составляют навстречу друг другу до соприкосновения. Для того, чтобы образовался ровный край, составленную полоску в натянутом положении протягивают через край стола, после чего составляют ее еще раз и для закрепления вновь протягивают через край стола. Полученную полоску наматывают на три пальца, сворачивают свободный конец внутрь образованного кольца.

Заготовка белья. К операционной белья относят медицинские халаты, которые застегиваются сзади, простыни, полотенца, полотняные салфетки, шапочки и маски. Перед стерилизацией операционная сестра проверяет целостность белья и складывает ее в биксы. Простыни составляют следующим образом: узкий край загибают на ширину 50 см, складывают четыре раза вдоль и нетуго скатывают, начиная с незагнутых концов. Составленную таким образом простыню очень удобно разворачивать.

Халаты складывают рукавами внутрь. После этого его нетуго скатывают. Полотенца и салфетки складывают вчетверо. Маски и шапочки стерилизируют, как правило, отдельно или вместе с материалом.

Укладка белья в биксы. Перед укладкой биксы вытирают изнутри и снаружи салфеткой, смоченной 0,5% раствором нашатырного или 96% раствора этилового спирта. Затем отодвигают на стенке бикса круговую пластинку, которая закрывает боковые отверстия, отвергают крышку и выстилают дно и стенки бикса пеленкой, салфеткой или простыней так, чтобы края свободно свисали со всех сторон. При укладке белья и перевязочного материала в биксы следует соблюдать установленного порядка, что позволяет быстро и легко найти необходимый предмет. Белье вкладывают в вертикальном положении, чтобы можно было извлечь из бикса любую вещь, не затрагивая остальных. Перевязочный материал также закладывают с тем расчетом, чтобы каждую пачку или пакет можно было вытянуть отдельно. В центральную часть бикса помещают пробирку с серой или другим веществом для контроля стерильности.

В зависимости от мощности операционного блока и назначение операционного белья, ее вкладывают комплектами. Закладывая материал и белье этим способом, нужно исходить из такого приблизительного расчета на одну операцию.

Халаты, колпаки, маски -4шт.
Простыни- 4шт.
Полотенца илиполотняные салфетки- 6 шт.
Шарики- 50шт.
Салфеткимарлевыетрехразмеров -10шт.
Тампонытрехразмеров -10шт.
Турунды-1моток
Бинтымарлевыешириной 14см – 2шт.

 

Когда бикс заполнен, края простыни, который выстилает, заворачивают один на второй этаж содержимого. В один из боксов поверх простыни закладывают халат, а на него – несколько марлевых салфеток и полотенце. Это необходимо для того, чтобы операционная сестра могла, помыв руки, вытереть их и одеть стерильный халат, не открывая остальных белья и материала.  

Укладка по виду белья и материала.Этот способ удобен в больших операционных блоках при значительном использовании белья и материала.

 

Хирургические инструменты

Хранение хирургических инструментов

Инструменты хранят в сухом отапливаемом помещении, при температуре 15-20 ° С. В этих помещениях нельзя одновременно хранить такие вещества, как хлорная известь, кислоты, йод. Инструменты текущего использования хранят в шкафах или специальных ящиках. Ножи и скальпели кладут на подставки так, чтобы лезвия ни к чему не соприкасались. Для длительного хранения и транспортировки инструменты, изготовления ленные из углеродистой стали, смазывают нейтральным вазелином и покрывают парафинном. Для этого их погружают в растопленный вазелин температуры 60-70 ° С, после чего заворачивают в парафиновый тонкую бумагу. Инструменты из нержавеющей стали (имеется клеймо НР или Н), а также из алюминия, латуни и бронзы, смазке не подлежат. Перед смазкой инструменты тщательно обезжиривают бензином или кипячением в воде с мылом или содой, затем промывают водой, высушивают и осматривают. Эту работу необходимо выполнять в перчатках, поскольку прикосновение к инструментам руками может вызвать ржавчину. При ее появлении инструменты чистят нашатырным спиртом, маслом или отдают для никелирования. Контроль за состоянием инструментов и их учет осуществляет старшая операционная сестра.

 

Источники информации:

Основные:

1.  Петров С.В. Общая хирургия. // М.: ГЭОТАР-Медиа, 2010.- 768 с.

2.  Гостищев В.К. Общая хирургия // М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009.- 608 с.

3.  Хірургія: Підручник з загальної хірургії / за ред. Я.С. Березницького, М.П.Захараша, В.Г. Мішалова, В.О. Шідловського.- Дніпропетровськ: РВА“Дніпро-VAL”, 2006.- 443 с.

4.  Пантьо В.І., Шимон В.М., Болдіжар О.О. Загальна хірургія // Ужгород, ІВА, 2010.- 464 с.

5.  Л.Я. Ковальчук та співав. Алгоритми спілкування студентів (лікарів) з пацієнтами (методичні рекомендації). Тернопіль, ТДМУ, «Укрмедкнига» 2009, 39 с.

6. Кіт О.М., Ковальчук О.Л., Пустовойт Г.Т. Медсестринство в хірургії. – Тернопіль: Укрмедкнига, 2002. – с.3- 50, 181- 222.

 

 

Дополнительные:

1.     М.П.Черенько, Ж.М.Ваврик. Общая хирургия. – К.:Здоров’я, 1999. – С.346-360.

2.     Палий Г.И. и спивавт. Антисептика в профилактике и лечении инфекций.- Киев.”Здоров”е” – 1997.

3.     Красильников А.П. Справочник по антисептике. Минск. Висшая школа.- 1995.